조직 블록의 부피에 대한 생물학적 현미경
집광기가 있는 생물학 현미경은 집광기를 위아래로 움직여 밝기를 적당하게 만들 수 있으며 가변 광 분석기의 조리개를 변경하여 9b의 적당한 밝기를 얻을 수도 있습니다. 빛이 태양에 있으면 콘덴서를 적절하게 올릴 수 있으며 가변 광학 노이즈의 조리개를 적절하게 확대할 수 있습니다. 빛이 너무 강하면 콘덴서를 적절하게 낮추고 교차점의 조리개를 적절하게 줄일 수 있습니다. 이 경우에도 여전히 눈부신 느낌이 든다면 적절한 필터를 선택하여 콘덴서 아래 브래킷에 올려 놓을 수 있습니다. 이 투사는 당신을 만족시키는 밝기를 얻을 수 있습니다. 물론, 광학 판독의 조리개 크기를 변경하고 적절한 필터를 선택하려면 콘덴서의 상단 및 하단 위치를 조정하는 데 일정 기간의 연습 후에 경험을 쌓아야 합니다.
생체현미경의 매우 중요한 문제는 관찰하고 분석하려는 세포에 손상이 가지 않도록 동결건조와 FD(Resin Embedding), 동결건조 후 각 부위의 65개 원소 함량을 주의 깊게 다뤄야 한다는 점이다. X선 미세분석은 여러 단계를 거쳐야 할 뿐만 아니라 비용도 많이 들기 때문에 장기간, 다단계 치료를 거쳐 분석한 세포가 손상된 세포이거나 죽은 세포라면 잘못된 결론을 내리는 것은 매우 안타까운 일이다. 예를 들어 콜라게나아제 처리로 분리한 심근세포는 긴 막대 모양과 둥근 모양의 두 가지 형태를 갖고 있습니다. 후자는 세포 분리 중에 손상되어 죽어가는 세포입니다.
이 두 종류의 세포에 있는 전해질의 함량과 분포는 생물학적 현미경으로 보면 매우 다릅니다. 둥근 심근세포에서는 Na가 매우 높고 K는 매우 낮으며 선형 수상돌기의 Ca 농도는 매우 높습니다. 다른 분석 방법과 비교하여 원형 세포의 높은 Na 및 낮은 K와 미토콘드리아의 높은 Ca는 세포 분리 중 세포막 손상의 결과임이 입증되었습니다. 세포와 조직의 저온 고정 방법은 먼저 담금질하여 고정한 다음 액체 질소에 보관하는 경우가 많습니다. 담금질 고정은 보존 효과에 매우 중요합니다. 살아있는 세포나 신선한 조직에는 물이 풍부합니다. 담금질을 할 때 동결방지제와 직접적으로 접촉하는 세포나 조직의 부분(특히 액체질소로 담금질할 때)이 먼저 얼고 고정되어 '껍질'을 형성하는 경우가 종종 있는데, 이는 중심부의 동결과 고정을 방해한다. 세포의 일부. 따라서 X선 미세분석을 할 때 큰 세포의 중앙에 얼음 결정이 있는 것을 흔히 발견할 수 있습니다. 이를 방지하기 위해 액체질소보다 녹는점은 높지만 건조온도는 806c보다 낮은 물질을 냉각제로 사용한다. 이러한 물질은 많지만 가장 쉽게 구할 수 있는 것은 농축 프로판(끓는점-42．120c, 녹는점-187．10c, 분자량-44.1)입니다. 가장 빠른 냉각 속도. 그러나 단점은 가연성입니다.
생물학적 현미경은 근섬유를 특수 프레임에 놓을 수 있으며 근섬유가 특정 단계로 수축하여 고정해야 할 때 노즐이 즉시 작동되어 액체 프로판이 근섬유에 분사되어 담금질 및 고정됩니다. 그것. 그런 다음 근육 섬유를 랙과 함께 꺼내 액체 질소에 넣습니다. 혈구나 분리된 세포가 고정된 경우 먼저 저속으로 원심분리하여 세포를 농축한 후, 열전도율이 좋은 은색 작은 튜브에 세포를 옮긴 후, 작은 튜브를 액체 프로판에 넣어 동결 고정합니다. 홀 연구실에서 쥐의 췌장을 고정할 때에는 강철블록 2개를 액체헬륨(또는 액체질소)으로 미리 냉각시키고, 구리블록 2개를 펜치로 췌장 앞뒤에 놓아 이모들이 담금질하고 고정하도록 했다. 조직이나 세포를 담금질하고 고정한 후 액체질소로 옮긴 후 장기간 보관할 수 있습니다.
