조직 블록의 부피에 대한 생물학적 현미경 검사
생체현미경 현재까지 얼음처럼 차가운 고정, 냉동 초박 절편 및 냉동 건조 조작은 조직과 세포의 X선 미소장을 위한 일반적인 방법입니다. 자세한 방법은 다음과 같습니다.
생물학 현미경 집광 렌즈가 있는 현미경을 위아래로 움직여 적당한 밝기를 얻거나 가변 광 확장기의 조리개를 변경하여 적당한 9b 밝기를 얻을 수 있습니다. 빛이 맑으면 스포팅 범위를 적절하게 높이고 가변 조명의 조리개를 적절하게 확대할 수 있습니다. 빛이 너무 강하면 스포트라이트 거울을 적절하게 낮추고 가변 조명의 조리개를 적절하게 줄여줄 수 있습니다. 이 경우에도 여전히 눈이 멀게 느껴진다면 스포트라이트 아래 브래킷에 배치된 적절한 필터를 선택할 수 있습니다. 이는 밝기에 만족할 수 있도록 얻을 수 있습니다. 물론, 콘덴서 렌즈의 상단 및 하단 위치 조정에서는 빛을 읽는 조리개의 크기와 적합한 필터의 선택이 달라질 수 있습니다. 즉, 일정 기간의 연습과 경험이 필요합니다.
생물학적 현미경 세포의 샘플링 및 분리 과정에서 매우 중요한 문제는 울트라북렛을 동결시킨 후 동결건조 및 수지 포매(FD), 65가지 원소 조성의 각 부분을 미세하게 런한 후 동결건조하는 과정에서 반드시 매우 조심스럽게 다루어야 하며, 관찰하고 분석할 세포를 손상시키지 않아야 합니다. X선 미세영역 분석은 단계가 많을 뿐만 아니라 비용도 매우 높기 때문에, 오랜 시간과 여러 단계의 처리를 거쳐 분석된 세포가 손상된 세포이거나 죽은 세포라면 잘못된 결론을 도출할 수 있습니다. 매우 유감스럽습니다. 예를 들어, 콜라게나아제 처리로 분리된 심근세포는 두 가지 형태를 가지며, 하나는 긴 막대 모양이고 다른 하나는 둥근 모양입니다. 후자는 세포 분리 중에 손상된 죽어가는 세포입니다.
생체현미경 이 두 유형의 세포에 있는 전해질의 함량과 분포는 매우 다릅니다. 둥근 심근세포에서는 Na가 매우 높았고 K는 매우 낮았으며, 미토콘드리아에서는 ca의 농도가 매우 높았습니다. 다른 분석방법으로 확인한 결과, 원형세포에서 높은 Na와 낮은 K, 그리고 미토콘드리아에서 높은 ca가 세포 분리 과정에서 세포막이 손상되어 발생한 결과인 것으로 나타났습니다. 세포와 조직의 저온 고정은 종종 담금질 고정에 이어 액체 질소에 보존함으로써 수행됩니다. 담금질 고정은 보존의 효율성을 위해 중요합니다. 살아있는 세포 또는 신선한 조직은 물이 풍부하며, 담금질할 때 종종 세포 또는 조직과 냉간제(특히 순수한 냉기 액체 질소 사용)가 첫 번째 동결 고정 부분과 직접 접촉하여 "껍질"을 형성합니다. 세포의 중심이 차가워지는 것을 방지합니다. 결과적으로 X선 미세세포 분석 중에 얼음 결정이 더 큰 세포의 중앙에서 발견되는 경우가 많습니다. 이를 방지하기 위해 액체질소보다 녹는점이 높지만 건조온도 806c보다 낮은 물질을 냉각제로 사용합니다. 이러한 물질은 많이 있지만 * 얻기 쉽고 값싸며 농축된 프로판(비등점 42.120c, 녹는점 187.10c, 분자량 44.1), 냉각 속도 * 빠릅니다. 하지만 불에 타기 쉽다는 단점이 있습니다.
생물학적 현미경은 특수 선반 근육 섬유에 배치할 수 있으므로 특정 시간 단계에 도달하기 위한 근육 섬유 수축을 고정해야 하며 즉시 노즐을 시작하여 액체 프로판이 근육 섬유로 분사되어 담금질되도록 합니다. 감기가 고쳐졌어요. 그런 다음 근섬유를 랙과 함께 꺼내어 액체 질소에 넣습니다. 혈액 세포 또는 분리된 세포를 고정하는 경우 먼저 저속 원심분리를 통해 세포를 농축하고 세포를 은색 튜브의 열 전도성이 좋은 곳으로 옮기고 튜브를 액체 프로판 시체에 넣어 차갑게 고정합니다. 홀 실험실 고정 쥐 췌장, 액체 헬륨(또는 액체 질소) 사전 냉각이 포함된 처음 두 개의 강철 조각, 클램프로 고정된 두 개의 구리 조각이 췌장 앞뒤에 배치되어 이모가 글랜드 담금질 냉간 고정. 조직이나 세포는 담금질 및 고정 후 오랫동안 액체 질소에 보관할 수 있습니다.
