조직 블록의 부피에 대해 수행되는 생물학적 현미경 검사
집광기가 있는 생물현미경은 집광기를 위아래로 움직여 밝기를 적당하게 만들 수 있으며, 적당한 9b 밝기를 얻기 위해 가변광 정교함의 조리개를 변경할 수도 있습니다. 빛이 맑으면 콘덴서를 위쪽으로 이동하고 가변 조명의 조리개를 확대할 수 있습니다. 빛이 너무 강하면 스포트라이트 거울을 적절하게 낮추고 가변 조명의 조리개를 적절하게 줄여줄 수 있습니다. 이 경우에도 여전히 눈이 멀게 느껴진다면 스포트라이트 아래 브래킷에 배치된 적절한 필터를 선택할 수 있습니다. 이는 밝기에 만족할 수 있도록 얻을 수 있습니다. 물론, 콘덴서 렌즈의 상단 및 하단 위치 조정에서는 빛을 읽는 조리개의 크기와 적합한 필터의 선택이 달라질 수 있습니다. 즉, 일정 기간의 연습과 경험이 필요합니다.
생물학적 현미경 세포의 샘플링 및 분리 과정에서 매우 중요한 문제는 울트라북렛을 동결시킨 후 동결건조 및 수지 포매(FD), 65가지 원소 조성의 각 부분을 미세하게 런한 후 동결건조하는 과정에서 반드시 매우 조심스럽게 다루어야 하며, 관찰하고 분석할 세포를 손상시키지 않아야 합니다. X선 미세영역 분석은 단계가 많을 뿐만 아니라 비용도 매우 높기 때문에, 오랜 시간과 여러 단계의 처리를 거쳐 분석된 세포가 손상된 세포이거나 죽은 세포라면 잘못된 결론을 도출할 수 있습니다. 매우 유감스럽습니다. 예를 들어, 콜라게나아제 처리로 분리된 심근세포는 두 가지 형태를 가지며, 하나는 긴 막대 모양이고 다른 하나는 둥근 모양입니다. 후자는 세포 분리 과정에서 손상된 죽어가는 세포입니다.
생물학적 현미경 근섬유는 특수 랙에 배치하여 이 근섬유의 수축이 고정이 필요한 특정 시간 단계에 도달한 다음 즉시 노즐을 활성화하여 액체 프로판이 근섬유에 분사되도록 할 수 있습니다. 그것은 담금질되고 차갑게 고정됩니다. 그런 다음 근섬유를 랙과 함께 꺼내어 액체 질소에 넣습니다. 혈액 세포 또는 분리된 세포를 고정하는 경우 먼저 저속 원심분리를 통해 세포를 농축하고 세포를 은색 튜브의 열 전도성이 좋은 곳으로 옮기고 튜브를 액체 프로판 시체에 넣어 차갑게 고정합니다. 홀 실험실 고정 쥐 췌장, 액체 헬륨(또는 액체 질소) 사전 냉각이 포함된 처음 두 개의 강철 조각, 클램프로 고정된 두 개의 구리 조각이 췌장 앞뒤에 배치되어 이모가 글랜드 담금질 냉간 고정. 조직이나 세포를 담금질하고 고정한 후 액체질소로 옮겨 장기간 보관할 수 있습니다.
생체현미경 현재 *홍보되는* 냉동 초박 절편 방법 외에도 과학자들이 사용하는 추가 증착 기술이 여기에 설명되어 있습니다. 분석 전에 물질을 첨가하여 분석 대상 성분과 함께 침전물을 형성하여 고정화시킨 후 침전물을 분석합니다. 예를 들어, 옥살산염과 피로안티모네이트는 일반적으로 근세포에 ca를 침착시키는 데 사용됩니다. 전자는 세포질의 낮은 농도의 ca에 충분히 민감하지 않습니다. 피로안티모네이트는 더 높은 민감도를 가지며 혈장 내 유리 칼슘과 함께 전자적으로 밀도가 높은 침전물을 형성하지만, 피로안티모네이트는 또한 특이성이 낮은 나트륨, 망간, 바륨 및 철과 함께 침전물을 형성합니다. 검체 준비 과정은 일반 투과전자현미경 초박절편 검체와 유사했지만, 고정 전 3% 칼륨 피로안티모네이트(인산염 완충액, pH 7.6)를 6시간 동안 고정시키고, 근육의 염색된 초박절편에 붙이는 차이점이 있으며, 각 근절제술 절편의 A 및 2 밴드의 정중선에 검은색 침전물이 보였으며, 염색되지 않은 절편을 X선 미세영역 분석에 사용했습니다. 디아미노벤지딘 테트라히드로클로라이드(DAB)는 특히 헤모글로빈 함유 물질을 침전시키는 데 사용되었습니다. 이러한 조직화학 침전반응과 X-ray Micro-area Bridge는 동결된 극박절편의 조건이 없는 실험실에서 활용될 수 있다고 생각된다. 분석할 원소의 피크 높이를 반정량 분석에 사용할 수 있습니다.
