생물학적 현미경을 사용한 조직 블록 부피 측정
지금까지 동결고정, 냉동 초{0}}박편화 및 동결-건조는 조직 및 세포 X{2}}선 현미경 검사에 대한 일반적인 방법입니다. 이 방법에 관해 다음 세부정보를 제공해 주세요.
스포트라이트가 있는 생물학 현미경은 스포트라이트를 위아래로 움직여 적당한 밝기를 얻을 수 있으며 가변 조리개의 조리개도 변경하여 적당한 밝기를 얻을 수 있습니다. 빛이 태양으로부터 오는 경우 스포트라이트를 적절하게 높이고 가변 조명의 조리개를 적절하게 확대할 수 있습니다. 빛이 너무 강하면 스포트라이트를 적절하게 낮추고 교차로의 조리개를 적절하게 줄일 수 있습니다. 이런 상황에서도 여전히 눈부신 느낌이 든다면 스포트라이트 아래 브래킷에 적절한 필터를 배치할 수 있습니다. 이 참나무는 당신이 만족할 만한 밝기를 얻을 수 있습니다. 물론, 스포트라이트의 상단과 하단 위치를 조정하면 빛을 읽는 조리개 크기가 변경되고 적합한 필터를 선택할 수 있으므로 일정 기간의 연습과 경험이 필요합니다.
생물학적 현미경에서 매우 중요한 문제는 세포를 샘플링하고 분리하는 과정입니다. 동결-건조 및 수지 포매(FD) 후, 관찰 및 분석 중에 각 부품의 65개 요소 함량이 손상되지 않도록 동결된 초박형 절편을 주의 깊게 처리해야 합니다. X-선 미세 분석에는 많은 단계와 높은 비용이 소요되므로 장기간 및 다단계 처리 후에 분석된 세포가 손상되거나 죽은 경우 잘못된 결론을 내리는 것이 유감스럽습니다. 젤라티나제 처리에 의해 분리된 심근세포는 두 가지 형태를 갖고 있는데, 하나는 긴 막대- 모양이고 다른 하나는 원형이다. 후자는 세포 분리 과정에서 손상되어 죽어가는 세포를 말합니다.
이 두 가지 유형의 세포에 있는 전해질의 함량과 분포는 생물학적 현미경으로 볼 때 매우 다릅니다. 원형 심근세포에서는 Na가 매우 높고 K는 극히 낮으며 선형 수상돌기의 Ca 농도는 매우 높습니다. 다른 분석 방법으로 검증한 결과 원형 세포의 높은 Na와 낮은 K, 미토콘드리아의 높은 Ca는 세포 분리 중 막 손상의 결과라는 것이 입증되었습니다. 세포와 조직의 저온 고정 방법은 종종 먼저 담금질한 다음 액체 질소에 저장하는 것을 포함합니다. 담금질 고정은 보존 효과에 매우 중요합니다. 살아있는 세포나 신선한 조직은 수분이 풍부하며, 냉각되면 냉매와 직접 접촉하는 세포나 조직의 부분(특히 냉각을 위해 액체질소를 사용할 때)이 먼저 얼고 고정되는 경우가 많아 세포의 중앙 부분이 으깨지고 고정되는 것을 방해하는 '껍질'을 형성합니다. 따라서 X-선 미세분석을 수행할 때 큰 세포의 중앙 부분에 얼음 결정이 존재하는 것을 종종 발견할 수 있습니다. 이러한 상황을 방지하기 위해 액체질소보다 녹는점이 높고 806c만큼 낮은 물질을 냉매로 사용합니다. 이러한 물질은 많지만 구하기 쉽고 가장 저렴한 것은 농축 프로판(끓는점 42.120c, 녹는점 187.10c, 분자량 44.1)이며 냉각 속도도 빠릅니다. 그러나 단점은 가연성이라는 것입니다.
